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    差異顯示PCR

    發(fā)布時(shí)間: 2021-12-21  點(diǎn)擊次數(shù): 922次

    材料與儀器

    反轉(zhuǎn)錄酶 熱穩(wěn)定 DNA 聚合酶 錨定 3'-寡核苷酸引物 隨機(jī) 5'-寡核苷酸引物 總 RNA 帶放射標(biāo)記的 dATP
    擴(kuò)增緩沖液 DD-PCR 反轉(zhuǎn)錄緩沖液 DTT dNTP 貯存液 胎盤(pán) RNase 抑制劑 測(cè)序膠上樣緩沖液
    瓊脂糖凝膠 電解質(zhì)梯度測(cè)序膠 屏蔽型槍頭 離心管 正向排液式移液器 PCR 儀 水浴箱

    步驟

    一、材料

    1. 緩沖液與溶液

    10X 擴(kuò)增緩沖液

    5X DD-PCR 反轉(zhuǎn)錄緩沖液(250 mmol/L Tris-Cl(pH 8.3),375 mmol/L KCl,15 mmol/L MgCl2)

    DTT ( 100 mmol/L)

    4 種 dNTP 貯存液(20 mmol/L,pH 8.0)

    胎盤(pán) RNase 抑制劑(20 單位/ml)

    5X 測(cè)序膠上樣緩沖液

    2. 酶與緩沖液

    反轉(zhuǎn)錄酶(RNA 依賴(lài)的 DNA 聚合酶)

    用于 DD-PCR 中的反轉(zhuǎn)錄酶是一種 RNaseH 活性缺陷型的酶(如購(gòu)自 Life Tech-nologies 公司的產(chǎn)品 Superscript 或者購(gòu)自 Stratagene 公司的產(chǎn)品 StrataScript)。

    熱穩(wěn)定 DNA 聚合酶

    3. 核酸與寡核苷酸

    錨定 3'-寡核苷酸引物(300 μg/ml)溶于 10 mmol/L Tris-Cl ( pH 7.6 ) 中,內(nèi)含有 0.1 mmol/L EDTA

    隨機(jī) 5'-寡核苷酸引物(50 μg/ml)溶于 10 mmol/L Tris-Cl ( pH 7.6)中,內(nèi)含有 0.1 mmol/L EDTA

    總 RNA(100 μg/ml)

    4. 凝膠

    瓊脂糖凝膠

    電解質(zhì)梯度測(cè)序膠

    5. 放射性物質(zhì)

    帶放射標(biāo)記的 dATP(10 μCi/μl,放射性比活度為 3000 Ci/mmol)

    6. 專(zhuān)用設(shè)備

    自動(dòng)微量移液器的屏蔽型槍頭

    離心管(0.5 ml,薄壁擴(kuò)增反應(yīng)專(zhuān)用離心管)

    正向排液式移液器

    PCR 儀

    水浴箱水溫預(yù)設(shè)在 65℃ 和 94℃



    二、方法

    優(yōu)化 DNA 濃度:cDNA 第一鏈的制備

    1. 用幾支 0.5 ml 離心管,設(shè)立實(shí)驗(yàn)反應(yīng)管系列,建立對(duì)照管和實(shí)驗(yàn)管的 RNA 最佳濃度,所謂最佳濃度指后續(xù) DD-PCR 擴(kuò)增在凝膠電泳和放射自顯影上呈現(xiàn) 100~300 條譜帶。用水對(duì) RNA 樣品進(jìn)行 5 倍連續(xù)稀釋系列,產(chǎn)生 RNA 樣品濃度范圍在 1 μg/ml 與 100 μg/ml 之間系列。

    2. 從錨定 3'-寡核苷酸引物庫(kù)中選擇一個(gè)或更多的引物,設(shè)立不同的稀釋 RNA 模板量的復(fù)性反應(yīng)系列:

    RNA 模板                  8.0 μl

    錨定 3'-寡核苷酸引物  2.0 μl 

    反應(yīng)管在 65℃ 水浴上溫育 10 min,然后放置在 37℃ 水浴上。

    復(fù)性反應(yīng)中總 RNA 量應(yīng)該在 8 ng 至 800 ng 之間變動(dòng)。

    3. 加入如下復(fù)性反應(yīng)試劑:

    5X DD-PCR 反轉(zhuǎn)錄緩沖液         4 μl

    100 mmol/L DDT                      2 μl

    200 μmol/L 4 種 dNTP 混合液    2 μl

    約 25 單位/μl RNase 抑制劑      0.25 μl

    200 單位/μl 反轉(zhuǎn)錄酶                0.25 μl

    H2O 補(bǔ)足至                             20 μl

    反應(yīng)管溫育樣品管在 37℃ 反應(yīng) 1 h。

    4. 將反應(yīng)管內(nèi)樣品在 94℃ 加熱 10 min,使反轉(zhuǎn)錄酶失活。

    優(yōu)化 RNA 濃度:雙鏈 cDNA 的擴(kuò)增與制備

    5. 用 8 只 0.5 ml 擴(kuò)增管設(shè)立兩個(gè)實(shí)驗(yàn)系列。每只管應(yīng)該包含如下試劑:

    10X 擴(kuò)增緩沖液                                                2 μl

    錨定 3' 寡核苷酸引物                                        2 μl

    20 mmol/L 4 種 dNTP 混合液(pH 8.0)              1 μl

    [α-33P] dATP 或 [α-35S] dATP ( 3000 Ci/mmol) 1 μl

    5 單位/μl 熱穩(wěn)定 DNA 聚合酶                            1 單位

    H2O                                                                9 μl

    對(duì)于每支反應(yīng)管加入 2 μl 5' 隨機(jī)引物,輕彈管壁使反應(yīng)液混勻。

    6. 從含有測(cè)試 RNA 與對(duì)照管 RNA 的反轉(zhuǎn)錄的兩個(gè)系列的 8 支試管中各取 3 μl 樣品,蓋上試管,輕輕混勻樣品。

    7. 如果 PCR 儀沒(méi)有配置加熱蓋,在反應(yīng)混合液的上層加一滴礦物油(約 50 μl)。放置離心管在 PCR 儀上。

    8. 擴(kuò)增反應(yīng)有變性、復(fù)性和聚合(延伸反應(yīng));相應(yīng)的循環(huán)條件與溫度列表如下:

    9. 擴(kuò)增反應(yīng)程序運(yùn)行結(jié)束后,從 PCR 儀取出反應(yīng)管,每只反應(yīng)管各加入 5 μl 5X 測(cè)序膠上樣緩沖液。

    10. 應(yīng)用 DNA 序列分析型的電解質(zhì)梯度聚丙烯酰凝膠電泳分離這種放射標(biāo)記擴(kuò)增物電泳在穩(wěn)壓電源作用下進(jìn)行,到二甲苯腈藍(lán)電泳至凝膠長(zhǎng)度的三分之二處結(jié)束。抽干凝膠,將凝膠放置在放射自顯影底片的下部壓片。

    11. 檢查對(duì)照與試驗(yàn) RNA 的不同濃度來(lái)源的擴(kuò)增反應(yīng)產(chǎn)物的 DNA 條帶譜型。一種理想的差異顯示的條帶譜型最好能清晰地分辨 100~250 條電泳譜帶。DNA 模板的最佳量對(duì)于不同的樣品、不同的引物也是個(gè)不相同的。選擇對(duì)照與試驗(yàn) RNA 的最適濃度,使得在該濃度下引物配對(duì)引導(dǎo)擴(kuò)增得到最大量的 DNA 產(chǎn)物。

    用于差異顯示的擴(kuò)增 cDNA 的制備

    12. 應(yīng)用所有的引物組合與 RNA 模板最佳量,重新復(fù)性,反轉(zhuǎn)錄和擴(kuò)增反應(yīng)。設(shè)計(jì)在 PCR 儀上用 96 孔板即微量滴定板設(shè)立所有的反應(yīng)循環(huán)。

    13. 應(yīng)用聚丙烯酰胺測(cè)序膠電泳分離擴(kuò)增反應(yīng)產(chǎn)物,如步驟 9 和 10。用每對(duì)引物所獲得的擴(kuò)增反應(yīng)樣品上樣在測(cè)序凝膠上的毗鄰的泳道上,比如應(yīng)用配對(duì)引物 A + B 從一種 RNA 樣品所獲得的擴(kuò)增樣品與同一對(duì)引物 A+B 從另一種 RNA 樣品所獲得的另一個(gè)擴(kuò)增產(chǎn)物在凝膠泳道上相鄰。用這種方法對(duì)于樣品編排序號(hào)后大大簡(jiǎn)化了對(duì)于放射自顯影帶譜的比較研究。

    14. 從不同的 RNA 樣品中用每一對(duì)引物所獲得的擴(kuò)增產(chǎn)物的帶譜的比較研究。

    在鑒定不同的表達(dá)條帶時(shí),通常重復(fù)試驗(yàn)確定初始發(fā)現(xiàn)的可重復(fù)性是極為重要的方法。盡管這種預(yù)防措施可能不具有可操作性的,但在理想的情況下,兩種 RNA 的不同批次的樣品應(yīng)該被同時(shí)應(yīng)用,便于相互印證。

    差異顯示的 cDNA 的回收與重?cái)U(kuò)增

    15. 從抽干的聚丙烯酰胺凝膠上回收目的條帶。防止放射自顯影 X 線(xiàn)片在凝膠的上方,對(duì)于放射自顯影 X 線(xiàn)片上的目的條帶的位置用軟鉛筆輕劃標(biāo)記。用干凈的剃須刀刀刃沿鉛筆標(biāo)記將上層的放射自顯影膠片與下層的凝膠一并切割,切下每一條目的條帶,將目的條帶的凝膠條貼放在 Whatman 3 MM 紙上;將每一薄片的抽干凝膠紙片放入一只 0.5 ml 的離心管(內(nèi)有 50 μl 滅菌水)。

    16. 用小的針穿刺每一只浸泡過(guò)夜的 0.5 ml 的離心管的底部;把每一只穿刺管放入一只 1.5 ml 離心管中,離心 20s 后將洗脫液轉(zhuǎn)移至另一只更大的離心管中,丟棄擴(kuò)增管中殘余的凝膠條和 Whatman 3 MM 紙條。

    17. 用已洗脫液中的 DNA 片段作模板,在擴(kuò)增反應(yīng)管中一次加入如下試劑:

    10X 擴(kuò)增反應(yīng)緩沖液                             2 μl

    聚丙烯酰胺凝膠中洗脫的 DNA 樣品       3 μl

    5'-隨機(jī)寡核苷酸引物                             2 μl

    3'-錨定寡核苷酸引物                             2 μl

    20 mmol/L 4 種 dNTP 混合液(pH 7.0)  1 μl

    5 單位/μl Taq 熱穩(wěn)定 DNA 聚合酶          2 單位

    H2O                                                    9.5 μl

    18. 如果 PCR 儀沒(méi)有配置加熱蓋,在反應(yīng)混合液的上層應(yīng)加一滴礦物油(約 50 μl)。放置離心管在 PCR 以上。

    19. 擴(kuò)增反應(yīng)有變性、復(fù)性和聚合(延伸反應(yīng));相應(yīng)的循環(huán)條件與溫度如下表:

    20. 抽取每種重?cái)U(kuò)增樣品的 5%~10%,用 1% (m/V) 瓊脂糖凝膠電泳來(lái)估計(jì)出重?cái)U(kuò)增 DNA 片段的含量。

    21. 若用礦物油覆蓋在微量離心管內(nèi)樣品液體的上層(步驟 18),反應(yīng)結(jié)束后可用 150 μl 氯仿抽提去除。

    22. 將重?cái)U(kuò)增 DNA 片段連入一種帶有 dT 尾的載體(如 Promega 公司出品的 pEGM T 載體),取部分連接液轉(zhuǎn)化大腸桿菌宿主菌。

    23. 從培養(yǎng)平皿上挑取 6 個(gè)或更多個(gè)轉(zhuǎn)化菌落,抽提其質(zhì)粒 DNA,應(yīng)用相應(yīng)的限制性?xún)?nèi)切核酸酶進(jìn)行酶切鑒定,通過(guò)比較插入片段的大小確定重組轉(zhuǎn)化子。

    24. 應(yīng)用盡可能多的途徑和方法對(duì)差異表達(dá)的候補(bǔ)的 cDNA/mRNA 分子進(jìn)行確證,這種確證方法包括 Northern 雜交,RNase 保護(hù)或定量 PCR。應(yīng)用 mRNA 原位雜交技術(shù)能夠?qū)?lái)自某種疾病或不同發(fā)育階段的組織和差異表達(dá)的特異轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物進(jìn)行組織定位。

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